La helicicultura es una actividad demandante de procesos investigativos para su óptimo desarrollo. En Colombia son casi nulos los avances documentados sobre el tema, por lo que es responsabilidad del médico veterinario idear estudios que generen un conocimiento real sobre argumentos tan valiosos como la prevención de enfermedades dentro del zoocriadero. Esta investigación pretende realizar un diagnóstico sanitario en cada etapa del ciclo biológico de Helix aspersa (O.F. Muller, 1774) manejado en cautiverio, para determinar la implicación de factores ambientales y formas de manejo en las enfermedades, logrando de esta manera la identificación y clasificación de los principales agentes patógenos de regiones aptas para la helicicultura en Colombia. También se desarrolla un análisis de estudios observacionales no paramétricos en casos patológicos particulares, que miden la prevalencia para cada enfermedad tras la aplicación de una encuesta epidemiológica de riesgos, una determinación de las patologías de acuerdo con la sintomatología presentada y un aislamiento microbiológico de los principales agentes patógenos contenidos en cada zoocriadero. De acuerdo con los resultados obtenidos y tras un análisis de la significación de los mismos serán documentadas las patologías más significativas dentro del helicicultivo, determinando cuáles son los principales factores de riesgo para su presentación. Gracias a las adecuadas prácticas de manejo estipuladas tras este estudio, se podrá prever la presencia de dichas alteraciones en la explotación del caracol de tierra en Colombia.

Abstract
Heliciculture requires investigative processes for its optimal development. Thera are few documented advances in Colombia, so its up to the veterinary doctor to devise studies on such valuable themes as the prevention of diseases in the breeding ffarm. This investigation aims toward health diagnostics in each stage of the biological cycle of Helix aspersa (O.F. Muller, 1774) handled in captivity, to determine how different environmental factors and forms of handling can be implied in the diseases, thus identifying and classifying the main pathogenic agents in different environmental conditions. Then, an analysis of nonparametric observations studies should be done to measure the prevalence of each disease after the application of a survey epidemiologist of risks, a determination of the pathologies in agreement with the presented/displayed sintomatology and a microbiological isolation of the main contained pathogenic agents in each breeding farm. In agreement to the obtained results and after an analysis of the meaning of such by means of the reasoning of the associations of these results, determining the rates of incidence for each disease and the presented/displayed relative risk, the most significant pathologies will be documented within heliciculture, determining as is the main factors of risk for their presentation and with this of anticipating, at the rate of suitable stipulated practices of handling after this study, the presence of these alterations in the operation of the earth snail in Colombia.

Introducción
La helicicultura es la cría en cautiverio del caracol de tierra para el consumo de su carne y el aprovechamiento de los subproductos generados.

La cría del escargot, limitada hasta hace poco a los países consumidores de Europa y Asia, se extiende ahora a naciones como Argentina, Chile y Brasil (Gabetta, 2004), que exportan la mayoría de su producción mientras promueven su consumo doméstico. Buscando aprovechar nuestra inigualable situación geográfica, es posible y razonable su cría en Colombia.

Además, la producción cárnica nacional afronta una importante reforma por los tratados de intercambio de productos pecuarios con Uruguay, Argentina, Chile, Brasil, México, y el TLC con Estados Unidos, situación que podría generar una competencia inequitativa, pues en estos países existen políticas y planes de apoyo estatal e investigación en el campo de la producción.

Así, es relevante investigar fuentes alternativas de proteínas mediante explotaciones de baja producción, como el Helix aspersa (O.F. Muller, 1774), molusco que constituye un alimento de elevado nivel y calidad proteica, con el 98% de los aminoácidos esenciales, nulo aporte en grasa y colesterol, rico contenido en sales minerales y vitaminas, y una gran versatilidad gastronómica (Sánchez, 2003).
Tras el agotamiento de las especies silvestres de caracoles en la Unión Europea por excesivo consumo (Fontanillas, 2005), y debido a su estacionalidad, resulta más económico importar los moluscos que producirlos bajo condiciones controladas. En Colombia, gracias a la ley 1011 del 23 de enero de 2006 se puede pensar en la creación de criaderos con miras a la exportación.
A causa del cautiverio obligatorio, las enfermedades del caracol en su hábitat natural se presentan con mayores índices de morbilidad y, por ende, la mortalidad poblacional es mayor. Por tanto, es indispensable conocer los agentes etiológicos para cada patología y comparar los hallazgos con los descritos en la bibliografía especializada, especificando los agentes patológicos más representativos en Colombia para disminuir su impacto en los zoocriaderos. Son casi inexistentes las experiencias documentadas sobre la cría de este molusco en nuestro país y la escasa bibliografía relacionada es extranjera.
Por lo anterior, la helicicultura se convierte en argumento para la investigación veterinaria, específicamente el manejo sanitario y la producción agropecuaria, para dar los primeros pasos en el desarrollo de una nueva actividad científica y económica en el país. El propósito es un desarrollo más científico, transmitiendo las experiencias propias y las evidencias encontradas después de la investigación bibliográfica y la validación de diferentes prácticas realizadas en todo el mundo.

Materiales y métodos

Marco geográfico
El estudio se desarrolló en 12 zoocriaderos helicícolas de la sabana cundiboyacense, en donde varían las condiciones climatológicas, observando cómo influye el medio ambiente en la presencia de los agentes etiológicos.

Población y muestra
La población objeto de estudio fue de cerca de 8.000 animales en diferentes etapas productivas para cada zoocriadero. La muestra tomada fue de 9 animales enfermos en cada etapa de la cría (reproductores, neonatos, animales en engorde) y 3 aparentemente sanos de cada helicicultivo, lo que nos da un total de 12 animales por plantel, es decir, 144 muestras.

Variables

Trabajo de campo
a. Visita al helicicultivo en distintas fechas.
b. Encuesta epidemiológica de riesgos en cada plantel, tabulando las respuestas en tablas de Excel individuales para cada granja.
c. Análisis ambiental: ratificación de parámetros medioambientales mediante un termohigrómetro. Anotación de los tesistas sobre la climatología presentada.
d. Análisis de manejo: para clasificar las prácticas como riesgosas o benéficas respecto a las diferentes patologías.
e. Toma de muestras: 3 caracoles enfermos menores de 20 días de edad (neonatos); 3 con edad no superior a los 4 meses, y 3 del lote de reproductores. De cada grupo etario se tomó un animal sano, completando con esto 12 muestras por plantel. Estos caracoles fueron conservados en envases previamente identificados con el helicicultivo perteneciente, edad y el número de muestra que les correspondía. Transporte en neveras de icopor, con adecuada refrigeración.

Metodología en laboratorio

Para la identificación bacteriana
a. Previo a cada viaje, se prepararon en el laboratorio los medios de cultivo afines para las muestras y los objetivos planteados.
b. En Agar Base Sangre se hicieron siembras de aparato digestivo, reproductor, respiratorio, excretor, circulatorio y de órganos externos para cada individuo.
c. Los agares sembrados se llevaron a incubadora a 37ºC por un tiempo no mayor a 96 horas.
d. 24 horas después de llevar los agares a la incubadora se revisaron las colonias, documentando el tiempo desde su siembra y las características morfológicas más importantes. Esto mismo se hizo cada 24 horas hasta completar las 96 horas como tiempo límite para el crecimiento bacteriano, de ahí en adelante se consideró negativo el crecimiento para esa muestra.
e. Cada colonia determinada fue resembrada en Agar Base Sangre las veces necesarias para conseguir colonias puras.
f. De éstas, se tomó una muestra para tinción de Gram y se documentó la morfología bacteriana.
g. Las bacterias Gram positivas de morfología cocoide fueron sometidas a las pruebas bioquímicas correspondientes (catalasa, oxidasa y coagulasa). Las bacterias Gram negativas y positivas de morfología bacilar fueron sometidas a las pruebas de catalasa, oxidasa, fenil alanita, TSI, Simon citrato, Urea, LIA, rojo metilo, Voges Proskauer y SIM, y se resembraron en Agar McConkey y Agar Cetrimide.
h. Estas pruebas bioquímicas fueron realizadas con colonias de no más de 24 horas y llevadas a incubadora por 24 horas para su posterior lectura.

Para la identificación fúngica
a. Las muestras previamente identificadas del aparato digestivo, reproductor, respiratorio, excretor, circulatorio y de órganos externos para cada individuo se sembraron en Agar Sabouraud.
b. Estos agares se llevaron a incubadora a 28 ºC hasta por 192 horas.
c. 24 horas después se revisaron los hongos, documentando el tiempo desde su siembra y las características morfológicas más importantes (velocidad de crecimiento, aspecto, color al comienzo y al final, además de alguna característica típica). Esto mismo se hizo cada 24 horas hasta completar las 192 horas como tiempo límite para el crecimiento fúngico, de ahí en adelante se consideró negativo el crecimiento para esa muestra.
d. De estos hongos se tomó una muestra para la tinción azul algodón de Lactofenol y se documentó la morfología determinando las siguientes características: micelio, fiálides y conidias.

Para la identificación de parásitos
a. Las muestras previamente identificadas fueron conservadas en formol buferado al 10% para posteriormente realizar la disección correspondiente.
b. Con la colaboración del laboratorio de parasitología de la facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Nacional de Colombia se realizaron las disecciones para diferenciar aparato reproductivo, intestino, estómago, hepatopáncreas, manto, órganos excretores y caparazón.
c. Estos órganos y aparatos fueron homogenizados en probetas individuales, con 15 ml de formol al 10%. Luego se tamizó a otro recipiente por medio de un colador con gasa, se exprimió el sedimento, se tomaron 10 ml de esta solución en un tubo cónico al cual se le agregaron 3 ml de éter etílico, tapando para agitar vigorosamente hasta su homogenización. Posteriormente, se centrifugó por 4 minutos a 1.200 rpm. Con un asa se removió la primera capa de desechos y se decantó, y al sedimento se le agregaron 2 gotas de yodo, tomando diferentes muestras de esto para observar al microscopio a 10x y 40x (técnica Ritchie).
d. Los parásitos encontrados se identificaron según los siguientes elementos de juicio: aspecto, grosor, largo del esófago, morfología cefálica, dilatación cuticular cefálica, presencia o ausencia de papilas cervicales, prebursales y del gubernáculo, largo de las espículas y terminación de las “colas” de las hembras.

Para la identificación de otras patologías
a. Mediante los resultados de la encuesta epidemiológica de riesgos, encuesta y observación de la sintomatología presentada y documentación de las pesquisas hechas en cada helicicultivo, se documentaron las siguientes patologías: enanismo por mala nutrición y genético, alteraciones de la concha por inadecuado manejo y por mala nutrición, alteraciones de la concha por causa genética, hernias genitales y ataque por depredadores.

Análisis estadístico

Los datos obtenidos fueron tabulados en bases de datos de Excel, individuales para cada helicicultivo estudiado.

Por tratarse de un estudio observacional no paramétrico, la estadística utilizada fue descriptiva y la significancia de los resultados se hizo mediante el análisis de las asociaciones de los mismos.

Con los resultados de la encuesta epidemiológica de riesgos y los hallazgos del análisis de muestras, se hicieron las tablas de contingencia correspondientes y el grado de asociación de estos resultados para cada patología, para luego tabular las tasas de incidencia de todos los agentes etiológicos caracterizados en este estudio, y la posterior determinación del riesgo relativo.



Resultados y discusión
 
En la identificación bacteriana



En la gráfica 1 se nota como de las 54 muestras aisladas se identificaron 2 para Salmonella sp., 16 para Staphylococcus aureus, 9 para Hafnia alvei, 2 para Pseudomonas sp., 4 para Streptococcus sp., 5 para Aeromonas hydrophila, 3 para Arcanobacterium sp., 10 para Corynebacterium sp., y 3 para Escherichia coli.
Así, se determina la presencia de bacilos Gram negativos y cocoides Gram positivos (Watkins, 1990); los de mayor incidencia fueron Hafnia alvei y Staphylococcus aureus, respectivamente. De los bacilos Gram positivos, el más representativo fue el Corynebacterium sp. (Odiete, 1983).
Para los animales neonatos, la bacteria más significativa fue Hafnia alvei. Para los animales mayores de 20 días y en ceba, la más significativa fue Corynebacterium sp. Para los animales mayores de 4 meses de edad y en etapa reproductiva, la más significativa fue Staphylococcus aureus.




La gráfica 2 muestra los porcentajes de presentación en las diferentes etapas productivas de los animales analizados. El 100% de las muestras aisladas con Arcanobacterium sp. correspondió a neonatos. El 80% de las muestras con Corynebacterium sp. correspondió a animales mayores a 20 días de edad que no habían ingresado a su etapa reproductiva y se encontraban en ceba. El 100% de las muestras con Aeromonas hydrophila correspondió a animales mayores de 4 meses de edad que ya se encontraban en etapa reproductiva.




La gráfica 3 muestra cómo 12 del total de las muestras en donde se aisló algún microorganismo bacteriano se hallaron en animales aparentemente sanos, que no presentaban ningún tipo de sintomatología. Para neonatos, la bacteria más significativa por el número de aislamientos fue la Pseudomona sp. Para los animales mayores a 20 días de edad que no habían ingresado a su etapa reproductiva y se encontraban en ceba, Staphylococcus aureus. Para los mayores de 4 meses de edad y en etapa reproductiva, Pseudomona sp. y Staphylococcus aureus.

Para neonatos, la bacteria más significativa por el número de aislamientos fue la Pseudomona sp. Para los animales mayores a 20 días de edad que no habían ingresado a su etapa reproductiva y se encontraban en ceba, Staphylococcus aureus. Para los mayores de 4 meses de edad y en etapa reproductiva, Pseudomona sp. y Staphylococcus aureus.



La gráfica 4 muestra el porcentaje de presentación de cada agente bacteriano aislado, en helicicultivos a menos de 15ºC y a más de 15ºC.
A menos de 15ºC., se aislaron E. coli, Hafnia alvei y Salmonella sp. con una presentación del 100%, y Corynebacterium sp. con el 83,3%, siendo los más representativos. A más de 15ºC., se aislaron Arcanobacterium sp. con presentación del 100%, Aeromona hydrophila con 80%, Pseudomona sp. con un 71,4%, y S. aureus con 59,1%, siendo los más representativos. Streptococcus sp. se aisló en los dos climas en igual proporción.




En la gráfica 5 se advierte que de las 5 muestras se identificaron 3 para Geotrichum sp., 1 para Penicillium sp., y 1 para Aspergillus sp.
De acuerdo con lo anterior, se determinó la presencia de hongos Aspergillus sp. (Cuéllar, 2000). Se pudo comprobar la presencia de Geotrichum sp. y Penicillium sp., siendo el más representativo por el número de aislamientos el Geotrichum sp. En neonatos, el hongo más significativo fue Penicillium sp.
En los mayores a 20 días de edad, en etapa prerreproductiva y en ceba, el más significativo fue Geotrichum sp. En los mayores de 4 meses de edad y en etapa reproductiva, el hongo más significativo fue Aspergillus sp. En ninguna de las muestras se aislaron los géneros Verticillium sp ni Fusarium sp, reportados en caracoles del género Helix por Cuéllar en 2000.





La gráfica 6 muestra el porcentaje de presentación de cada agente fúngico aislado, en helicicultivos localizados a menos de 15ºC y a más de 15ºC.
En helicicultivos localizados en regiones cuya temperatura promedio es inferior a los 15ºC., fueron aislados Aspergillus sp., y el Penicillium sp., con un porcentaje de presentación del 100%, y el Geotrichum sp., con un 66.7% siendo los más representativos.
En helicicultivos localizados en regiones cuya temperatura promedio es superior a los 15ºC., fue aislado únicamente el Geotrichum sp., con un porcentaje de presentación del 33.3%, por lo que no es representativo.


En la identificación de parásitos




En la gráfica 7 se advierte cómo de las 22 muestras aisladas se identificaron 8 para Strongyloididae, 7 para Oxiuridae, 6 para Riccardoella limacum y 1 para Nyctotheridae.
De acuerdo con lo anterior, se puede determinar la presencia de diferentes tipos de parásitos nemátodos, protozoarios y ácaros (Cuéllar, 2000), entre los cuales se identificaron las familias Strongyloididae y Oxiuridae dentro de los nemátodos, la familia Nyctotheridae dentro de los protozoarios y el ácaro Riccardoella limacum.
En neonatos, el parásito más significativo fue Riccardoella limacum. En animales mayores a 20 días de edad, en etapa prerreproductiva y en ceba, Strongyloididae. En animales mayores de 4 meses de edad y en etapa reproductiva, Strongyloididae y Oxiuridae.




La gráfica 8 relaciona los diferentes parásitos identificados y sus porcentajes de presentación.
El 100% de las muestras aisladas con Nyctotheridae correspondieron a animales mayores a 20 días de edad, en etapa prerreproductiva y en ceba. El 42,85% de las muestras con Oxiuridae correspondieron a animales mayores de 4 meses de edad, en etapa reproductiva. Riccardoella limacum se encontró en los mismos porcentajes (33,33%) en las tres etapas estudiadas.
En ninguna de las muestras se aislaron parásitos dípteros, céstodos ni tremátodos, reportados en caracoles del género Helix por Cuéllar en 2000.



La gráfica 9 muestra el porcentaje de presentación de cada parásito aislado en helicicultivos a menos de 15ºC y a más de 15ºC.
A temperatura promedio inferior a 15ºC, se aislaron Nyctotheridae con un 100%, Oxiuridae con 83,3%, y Strongyloididae con 75%, siendo los más representativos.
A más de 15ºC., se aisló el ácaro Riccardoella limacum, con presentación del 80%, siendo el más representativo.



La gráfica 10 muestra los porcentajes de presentación de otras patologías.
El 33,33% de los ataques por depredadores fue a neonatos. El 100% del enanismo por mala nutrición se presentó en animales mayores a 20 días de edad, en etapa prerreproductiva y en ceba. El 100% del enanismo genético se encontró en animales mayores de 4 meses de edad y en etapa reproductiva.



La gráfica 11 muestra el porcentaje de presentación de otras patologías en helicicultivos a menos de 15ºC y a más de 15ºC. A menos de 15ºC, se encontraron alteraciones de la concha con presentación del 85,7%, enanismo con un 80%, y ataques por depredadores con el 66,7%, siendo los más representativos. A más de 15ºC, los porcentajes de presentación de otras patologías no son significativos.



Conclusiones

Hallazgos bacterianos


• Las principales enfermedades bacterianas presentes en caracoles del género Helix aspersa en helicicultivos de la sabana cundiboyacense corresponden etiológicamente a: Staphylococcus aureus, Pseudomona sp., Aeromona hydrophila, Hafnia alvei, Corynebacterium sp., Arcanobacterium sp., Salmonella sp., Escherichia coli y Streptococcus sp.

• Los agentes bacterianos que causan enfermedades primarias son: Staphylococcus aureus, Pseudomona sp., Corynebacterium sp. y Aeromona hydrophila.

• Los agentes bacterianos que actúan de forma oportunista son: Salmonella sp., Streptococcus sp. y Arcanobacterium sp.

• Los agentes bacterianos que pueden actuar como causales de enfermedades primarias o como oportunistas son: Hafnia alvei y Escherichia coli.

• Las bacterias aisladas en animales sanos y que por ende actúan como “flora microbiana normal” son: Staphylococcus aureus, Pseudomona sp. y Escherichia coli.

• Las bacterias con mayor incidencia patógena que afectan a caracoles del género Helix aspersa según la etapa productiva en que se encuentren son: Hafnia alvei en neonatos); Corynebacterium sp. en caracoles mayores a 20 días de edad, etapa prerreproductiva y en engorde, y Staphylococcus aureus en mayores de 4 meses de edad y en etapa reproductiva.

• Arcanobacterium sp. afecta en su mayoría a neonatos.

• Corynebacterium sp. afecta en su mayoría a animales mayores a 20 días de edad, etapa prerreproductiva y en engorde.

• Aeromona hydrophila afecta en su mayoría a caracoles mayores de 4 meses de edad, en etapa reproductiva.

• Staphylococcus aureus es la bacteria con mayor incidencia de presentación en estos caracoles.

• Helicicultivos situados en regiones de más de 15ºC tienen mayor riesgo de presentar patologías bacterianas causadas por agentes primarios como Aeromona hydrophila, Pseudomona sp. y S. aureus. Asimismo, en este clima es frecuente la presentación de la oportunista Arcanobacterium sp.

• Helicicultivos situados en regiones de menos de 15ºC, tienen mayor riesgo de presentar la patología causada por la oportunista Salmonella sp. Asimismo, en este clima es frecuente la presentación de Corynebacterium sp. como agente primario, y E. coli con Hafnia alvei, que pueden actuar de ambas formas.

• Streptococcus sp. se presenta en los dos tipos de clima.

• La excesiva humedad y el inadecuado manejo sanitario predisponen a la presentación agresiva de las enfermedades bacterianas anteriormente mencionadas.

Hallazgos fúngicos

• Las principales enfermedades fúngicas presentes en helicicultivos de la sabana cundiboyacense corresponden etiológicamente a: Aspergillus sp., Penicillium sp. y Geotrichum sp.

• La enfermedad fúngica primaria es la causada por Aspergillus sp.

• Las enfermedades fúngicas oportunistas son las causadas por: Geotrichum sp. y Penicillium sp.

• Los hongos con mayor incidencia patógena son: Penicillium sp. en caracoles neonatos; Geotrichum sp en mayores a 20 días, etapa prerreproductiva y en engorde, y Aspergillus aureus en caracoles mayores de 4 meses de edad, en etapa reproductiva.

• Penicillium sp. afecta en su mayoría a caracoles neonatos.

• Geotrichum sp. afecta en su mayoría a los mayores a 20 días de edad, etapa prerreproductiva y en engorde.

• Aspergillus sp. afecta en su mayoría a caracoles mayores de 4 meses de edad, en etapa reproductiva.

• Geotrichum sp. es el hongo con mayor incidencia de presentación.

• Helicicultivos situados en regiones de más de 15ºC tienen mayor riesgo de presentar la patología causadas por el siguiente agente primario: Aspergillus sp. Asimismo, es frecuente la presentación de los oportunistas Geotrichum sp. y Penicillium sp.

• Aspergillus sp. ataca con mayor frecuencia en helicicultivos que proporcionen una alimentación a base de harinas. Geotrichum sp., por el contrario, ataca con mayor frecuencia helicicultivos cuya alimentación sea a base de vegetales. Penicillium sp. puede presentarse en cualquiera de las anteriores.

• Helicicultivos que manejan humedades muy altas, así como una inadecuada ventilación de los recintos, son los más predisponentes a la presentación de estas enfermedades fúngicas.


Hallazgos parasitarios

• Las principales enfermedades parasitarias presentes en helicicultivos de la sabana cundiboyacense corresponden etiológicamente a: familias Strongyloididae, Oxiuridae y Nyctotheridae, y el ácaro Ricardoella limacum.

• Todos los agentes parasitarios anteriormente descritos pueden ser encontrados en animales sanos. Sin embargo, en grandes infestaciones, pueden causar cuadros patológicos graves que llevan al animal a un detrimento de sus actividades hasta la muerte.

• Los parásitos con mayor incidencia patógena son: ácaro Ricardoella limacum en caracoles neonatos; familia Strongyloididae en mayores a 20 días de edad, etapa prerreproductiva y en engorde, y familias Oxiuridae y Strongyloididae en mayores de 4 meses y en etapa reproductiva.

• El ácaro Ricardoella limacum afecta en su mayoría a caracoles neonatos.

• Los pertenecientes a la familia Nyctotheridae afectan en su mayoría a caracoles mayores a 20 días de edad, etapa prerreproductiva y en engorde.

• La familia Oxiuridae afecta en su mayoría a caracoles mayores de 4 meses de edad y en etapa reproductiva.

• La familia Strongyloididae muestra la mayor incidencia de presentación.

• Helicicultivos situados en regiones a menos de 15ºC tienen mayor riesgo de presentar las patologías causadas por las familias Strongyloididae, Oxiuridae y Nyctotheridae porque las hortalizas con mayor palatabilidad para Helix aspersa se cultivan en su mayoría en regiones con climas fríos y estos parásitos se desarrollan en estos cultivos.

• Helicicultivos situados en regiones a más de 15ºC tienen mayor riesgo de presentar la patología causada por el ácaro Ricardoella limacum.

• La inadecuada desinfección de la tierra, una higiene inapropiada de los alimentos y la mala calidad del agua son los factores más predisponentes en la presentación de las patologías parasitarias anteriormente descritas.

• La recolección silvestre de caracoles sin el adecuado manejo sanitario preventivo genera en el helicicultivo la presencia de agentes patógenos, afectando en gran medida la productividad de la granja y generando grandes pérdidas para el helicicultor.

• En escenarios de sobrepoblación, estos agentes infecciosos generan patologías con morbi-mortalidades muy altas, siendo más complicado su manejo y control al momento de iniciar una terapia.
 
Hallazgos de otras patologías no infecciosas

• Las principales patologías no infecciosas presentes helicicultivos de la sabana cundiboyacense corresponden a: enanismo por mala nutrición y genético, malformaciones de la concha por inadecuada suplementación de minerales en la dieta, alteraciones de la concha por mal manejo o por causa genética, hernias genitales y ataque por depredadores.

• Las patologías no infecciosas con mayor incidencia de presentación son: ataque por depredadores en caracoles neonatos; enanismo por mala nutrición en caracoles mayores a 20 días de edad, etapa prerreproductiva y en engorde, y enanismo genético en caracoles mayores de 4 meses de edad y en etapa reproductiva.

• El enanismo es la patología no infecciosa con mayor incidencia de presentación en caracoles del género Helix aspersa.

• Helicicultivos situados en regiones a más de 15ºC tienen mayor riesgo de presentar las siguientes patologías no infecciosas: ataque por pequeños depredadores, enanismo y alteraciones de la concha.


Bibliografía


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Fontanilla, J. El caracol y la helicicultura. Ediciones Mundi-Prensa. Madrid, España. 2002.

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Watkins, B., Simkiss, K. Interactions between soil bacteria and the molluscan alimentary tract. Journal of Molluscan Studies. Department of Pure and Applied Zoology. University of Reading. England. 1990.


Sobre los autores:

Felipe A. Moncada Reyes 14012507 MV ULS – Investigador de helicicultura Instituto de Biotecnología Universidad Nacional de Colombia
Paola A. Veloza Martínez 14012106 MV ULS – Investigadora de helicicultura Instituto de Biotecnología Universidad Nacional de Colombia

Directores
Dr. Germán Rodríguez Martínez. MVZ, MSc, PhD.
Dra. Lilia Reyes Herrera Bióloga, MSc, PhD.